domingo, 10 de junio de 2012

UNIDAD X: TÉCNICAS DE LA BIOLOGÍA MOLECULAR


SEP                          SNEST                   DGEST




UNIDAD X: 



TÉCNICAS DE LA BIOLOGÍA MOLECULAR



QUE PRESENTA:

Arisbeth Salgado Mendoza
09930054


Lic. BIOLOGIA VI "A"


Ciudad Altamirano, Gro. México. JUNIO del 2012







INTRODUCCIÓN:


Se denomina así a todas las técnicas de laboratorio que se usan para aislar ADN o extraerlo en alta pureza, visualizarlo para ver su estado, cortarlo y pegarlo (nacimiento de la Ingeniería genética), amplificar una región en una enorme cantidad de moléculas (clonación de fragmentos en bacterias u otros vectores como virus y PCR), corte de una determinada región con enzimas de restricción para ver si por una mutación se gana o se pierde un sitio de restricción (análisis de mutaciones por RFLP o Restriction fragment lengt polymorphism), que siginifica: diferencias en los tamaños de los fragmentos de restricción debido a polimorfismos en el ADN entre otras.
Todas estas técnicas tiene diversas aplicaciones generalmente en el diagnóstico de enfermedades hereditarias, búsqueda de alelos mas o menos frecuentes asociados a una característica que nos interesa seleccionar, diagnóstico de contaminación bacteriana en alimentos (detección de Escherichi coli 0257, cepas difrenctes de Salmonellas, Mycobacterium sp) diagnóstico viral o de infección viral (HIV, Hpatitis C, PIF, otros), selección de marcadores moleculares para asistir en el mejoramiento genético de una especie, test de paternidad, diganóstico de identidad forense, etc.
La primera técnica que todas las demás necesitan es la extracción del ADN, y para ello es necesario purificarlo desde cualquier tejido aunque usualmente se hace a partir de sangre. Se basa en una serie de lavados de la muestra y agregado de proteinasas que eliminan las proteínas del medio, detergentes para elminar las membranas plasmáticas y luego ir purificando el ADN de esa mezcla de ARN proteínas y restos celulares.


OBJETIVOS: 

  • Conocerá y aplicará las bases moleculares del ADN para su manipulación y en el mejoramiento genético de especies de interés alimenticio, medico y ecológico.


METODOLOGÍA:
En esta unidad vamos a verificar los pasos correspondientes en la unidad así analizarla y el profesor darnos a conocer como se lleva acabo las técnicas de la biología molecular así como los métodos de purificación y análisis de los ácidos nucleicos y sobre todo la técnica de HIBRIDACION.



10.1 MÉTODOS DE PURIFICACIÓN Y ANÁLISIS DE LOS ÁCIDOS NUCLEICOS



La concentración del ADN, éste será utilizado básicamente con el propósito de amplificar determinadas secuencias del mismo mediante PCR.

En ciertos casos la simple detección del fragmento amplificado tiene valor diagnóstico por sí mismo. La metodología empleada para la detección puede ser:

1.      separación y visualización de dicho fragmento en geles adecuados de agarosa o poliacrilamida. En otros casos el valor diagnóstico se obtiene por comparación de la movilidad del fragmento en un gel, respecto a un fragmento de características conocidas.

2.      detección del fragmento amplificado mediante ELISA con revelado colorimétrico o quimioluminiscente.

Por el contrario, en otros casos el valor diagnóstico se alcanza una vez que el fragmento amplificado se analiza mediante cualquiera de las siguientes técnicas:

1.      Corte con enzimas de restricción. Los fragmentos generados en la restricción se separan en geles de agarosa o poliacrilamida adecuados.

2.      Hibridación.  Los fragmentos generados en el PCR se separan en  gel de agarosa, se transfieren a un soporte adecuado (nitrocelulosa, nylon), y finalmente se hibridan con un ADN sonda marcada.

3.      Secuenciación.  Los fragmentos generados durante la reacción de secuenciación se separan en geles desnaturalizantes de poliacrilamida 






10.2 TÉCNICAS DE HIBRIDACION



Las técnicas de hibridación se parte de dos poblaciones de ácidos nucléicos: un conjunto homogéneo de ácidos nucléicos de secuencia conocida que actúa como sonda y otro conjunto heterogéneo de ácidos nucléicos de secuencia desconocida donde queremos detectar la secuencia diana. Una de ellas debe estar marcada. Si lo está la sonda, la hibridación es estándar. Si lo está la diana, la hibridación es reversa. Los ácidos nucléicos de partida son de cadena sencilla, bien procedentes de ADN clonado y fragmentado por enzimas de restricción, bien oligonucleótidos sintéticos. La hibridación puede producirse en medio líquido o sobre un soporte sólido, como nitrocelulosa, al que se encuentra unida una de las dos poblaciones de ácidos nucléicos. En la hibridación estándar sería el ADN diana el que iría unido al soporte sólido, mientras que en la hibridación reversa sería la sonda. Durante la hibridación se produce la unión de las moléculas diana con las moléculas sonda. Esta unión depende de la complementariedad de bases. Se pueden adaptar las condiciones para conseguir la especificidad de secuencia requerida para que se produzca la hibridación. Así, aumentando la fuerza iónica (por ejemplo, la concentración de cloruro sódico NaCl) o disminuyendo la temperatura se permite la hibridación aunque existan algunas bases no complementarias. Por el contrario un aumento de la temperatura o una disminución de la fuerza iónica producen una hibridación más específica que tolera menos fallos en la complementariedad de las secuencias a hibridar. Estas condiciones varían según el objetivo de la prueba: Así, por ejemplo, comparar ADN de especies diferentes necesita condiciones relajadas, pero identificar mutaciones puntuales en un gen necesita condiciones que fuercen una hibridación muy específica. 
La hibridación es la base de muchas técnicas moléculares, como en la PCR (reacción en cadena de la polimerasa), Northern Blot, Southern Blot, microarrays de ADN, hibridación in situ o screening de genotecas. Su uso extendido en diagnóstico molecular abarca el diagnóstico de enfermedades, la identificación de microorganismos patógenos, el análisis de perfiles de expresión génica, la localización de genes en cromosomas, la detección de ARNm en tejidos in situ o la comparación de especies de patógenos.



10.3 TÉCNICAS DE CLONACION DE GENES


FASES
1. Preparación del gen
2. Inserción en el vector
3. Transformación de la célula hospedadora
4. Detección de genes clonados
5. Optimización de la expresión de los genes clonados

Consiste en la obtención de un gran número de fragmentos idénticos a partir de uno original. Para ello se aísla primero el fragmento de DNA que se quiere clonar, se liga a un transportador o vector (plásmidos, fagos , cósmidos etc..) que tras introducirlo dentro de una célula va a permitir su replicación por cultivo. Una vez replicado considerablemente se recupera junto con el vector correspondiente y posteriormente se le separa del vector, obteniendo como resultado un gran número de copias del fragmento de interés.


10.4 PRUEBA DE PCR EN EL DIAGNOSTICO DE ENFERMEDADES

La reacción en cadena de la polimerasa (PCR: polymerase chain reaction) es una técnica de amplificación de secuencias de DNA in vitro.

Pasos en la PCR
KLENOW
• Desnaturalización 100oC
• Unión cebadores y polimerización 37oC Taq POLIMERASA
• Desnaturalización 95oC
• Unión cebadores (45-55oC) Tm
• Polimerización 72oC

Elementos de la PCR
• DNA Molde
• Cebadores (oligonucleótidos)
• DNA polimerasa termoestable
• Desoxinucleótidos trifosfatos
• Tampón de reacción
• pH
• Cationes divalentes
• Cationes monovalentes

Aplicaciones
• Clonaje de genes
• Diagnóstico
• Evolución molecular
• Cuantificación de mRNAs
• Secuenciación
• Localización de AN in situ
• Forense
• Otras

Uno de los argumentos mayores contra la hipótesis VIH=SIDA es que cuando se utilizan métodos tradicionales de detección de virus, el VIH nunca ha sido hallado en cantidades significativas en personas con SIDA. Puesto que se precisan millones o miles de millones de copias de un virus para enfermar, un problema para la hipótesis VIH=SIDA era que, incluso usando la PCR estándar (normal), los investigadores no podían encontrar en las personas con SIDA mucha cantidad de VIH, si es que encontraban alguna. Para resolver esta paradoja, los autores de los artículos de la nueva «carga viral» salieron con dos nuevas modificaciones de la PCR, de las cuales afirmaban que eran mucho más eficaces para encontrar el VIH. Estas fueron la PCR-QC y la PCR de ADN ramificado (b-DNA PCR). Y de repente, -¡eureka!- hallaron miles de millones de copias del VIH.



10.7 TECNOLOGÍA DEL ADN RECOMBINANTE

ADN recombinante es una molécula que proviene de la unión artificial de dos fragmentos de ADN. Por lo tanto, la tecnología de ADN recombinante es el conjunto de técnicas que permiten aislar un gen de un organismo, para su posterior manipulación e inserción en otro diferente. De esta manera podemos hacer que un organismo (animal, vegetal, bacteria, hongo) o un virus produzca una proteína que le sea totalmente extraña.
Estas técnicas se emplean normalmente para la producción de proteínas en gran escala, ya que podemos hacer que una bacteria produzca una proteína humana y lograr una superproducción, como en el caso de la insulina humana, que actualmente es producida por bacterias en grandes recipientes de cultivo, denominados biorreactores. Como las bacterias se multiplican muy rápidamente y pueden expresar grandes cantidades de proteínas, es posible lograr una sobreproducción de la proteína deseada. A esto justamente se dedica labiotecnología, es decir a la utilización de organismos vivos o de sus productos con fines prácticos.
El desarrollo de la tecnología del ADN recombinante fue posible gracias a varias líneas de investigación:
1) el conocimiento de las enzimas de restricción.
 2) la replicación y reparación de ADN.
 3) la replicación de virus y plásmidos.
 4) la síntesis química de secuencias de nucleótidos. 

Las enzimas de restricción son endonucleasas que clivan (hidrolizan) en una forma específica puentes fosfodiéster 3' - 5' entre pares de bases adyacentes en la doble cadena de DNA.
Las enzimas de restricción reciben su nombre de la bacteria de la que fueron aisladas por ejemplo: EcoRI de Escherichia coli, BamHI de Bacillus amyloliquefaciens. Las tres primeras letras en el nombre de la enzima, corresponden la primera al genero (E) y las otras dos a la especie (co). Éstas pueden ir seguidas por la designación de una cepa ( R) y un número romano (I) para indicar el orden del descubrimiento.
El tipo más común de enzimas de restricción (tipo II) usado en la tecnología del DNA recombinante proviene de bacterias y no requiere fuente de energía para el clivaje del puente. Requiere en cambio iones Mg++ para la unión específica al DNA y posterior clivaje.
Otras enzimas de restricción clivan palíndromos de DNA de 4 o 6 pb. Algunas otras enzimas de restricción clivan una secuencia única. Estas enzimas que reconocen la misma secuencia se llaman ISOCHIZOMERS.
Las enzimas de restricción de tipo OO son parte de un sistema de restricción / modificación en la bacteria. La misma tiene un “sistema” de protección contra sus propias enzimas de restricción a través de una enzima acompañante que metila nucleótidos de su ADN y los convierte en un sustrato inadecuado para ser digerido en las secuencias de 6 reconocimientos. Por esto es que las ADN metilasas de sitio específico y las enzimas de restricción siempre están por pares en una bacteria.





CONCLUSIÓN:
En esta unidad vimos como se llave a cabo las técnicas de la biología molecular, así como los métodos de purificación y análisis de los ácidos nucleicos, la técnica de HIBRIDACION, etc... en esos pasos el profesor nos explico detenidamente para así poder nosotros interpretar muy bien..


BIBLIOGRAFIA:
  • http://free-news.org/cjohns02.htm
  • http://aportes.educ.ar/biologia/nucleo-teorico/influencia-de-las-tic/tecnologia-del-adn recombinante/que_es_la_tecnologia_del_adn_r.php
  • http://www.med.unne.edu.ar/catedras/bioquimica/pdf/dnarec07.pdf

miércoles, 6 de junio de 2012

UNIDAD IX: TRANSFERENCIA DEL MATERIAL GETICO


SEP                        SNEST                 DGEST




UNIDAD IX: 



TRANSFERENCIA DEL MATERIAL GENETICO



QUE PRESENTA:

Arisbeth Salgado Mendoza
09930054


Lic. BIOLOGIA VI "A"


Ciudad Altamirano, Gro. México. MAYO del 2012







INTRODUCCIÓN:




El mecanismo de reproducción habitual en bacterias es la bipartición. Mediante este mecanismo se obtienen dos células hijas, con idéntica información en el ADN circular, entre sí y respecto a la célula madre, y de contenido citoplásmico celular similar. Las células hijas son clones de la progenitora. Por este sistema de reproducción se puede originar una colonia de células con material idéntico; sin embargo, esto no ocurre debido al alto índice de mutaciones que se producen en las bacterias.
La bipartición se produce cuando la célula ha aumentado su tamaño y ha duplicado su ADN. El ADN bacteriano  se une a un mesosoma, que separa el citoplasma en dos y reparte cada copia del ADN duplicado a cada lado. Al final del proceso el mesosoma se ha unido al resto de la membrana plasmática y se han formado dos células hijas genéticamente iguales.

Reproducción parasexual

En ocasiones, la célula bacteriana tiene la oportunidad de intercambiar información genética por procesos de recombinación. Estos procesos son la transformación, la transducción y la conjugación. En estos procesos no hay formación de ningún tipo de gametos, por lo que no es reproducción sexual. 

  • La transferencia es unidireccional, es decir, tiene una determinada polaridad, existiendo células donadoras y células receptoras.

  • La transferencia del genomio de una célula a otra no suele ser total, sino parcial.

  • Parte del material genético, una vez introducido en la célula receptora, sufre inmediatamente un fenómeno de recombinación con el genomio de la receptora. El resto del material de la donadora o no se replica, o se ve destruido.

  • Como se puede deducir, tras los procesos de transferencia genética bacteriana, no surge una diploidía total (como es el caso en eucariotas), sino una diploidíaparcial, que recibe el nombre de merodiploidía. Las células bacterianas diploides parciales reciben la denominación de merodiploides o merozigotos. Además, la merodiploidíasuele ser transitoria.


            Este tipo de intercambio genético unidireccional, con diploidía transitoria parcial, se denomina meromixia, para distinguirlo de la reproducción sexual de eucariotas.

El genomio de la célula receptora se suele denominar endogenote.
La porción de genomio de la cél. donadora que se transfiere se llama exogenote.


OBJETIVOS:


  • Entenderá las bases moleculares del intercambio del material genético entre los diferentes seres vivos para su posterior aplicación.

METODOLOGÍA:

En esta unidad fuimos viendo detenidamente los subtemas y así el profesor iba explicando detalladamente los pasos que se dan a la transferencia del material genético y así posteriormente nosotros y vamos notando lo mas importante o sobresaliente de eso lo cual lo identificare en dicho blogger..


9.1 MECANISMOS DE TRANSFERENCIA NATURAL
9.1.1 TRANSFORMACIÓN



Fragmentos de ADN que pertenecían a células lisadas (rotas) se introducen en células normales. El ADN fragmentado recombina con el ADN de la célula receptora, provocando cambios en la información genética de ésta.
  •   Las bacterias se transmiten material genético através de DNA libre en el medio,elementos episomiales.
  •  La bacteria receptora tiene mecanismos para captar el DNA a través de sus envolturas externas e introducirlo en su cromosoma.
  •   Los genes intracrosomales se recombinan dando lugar a genes mosaico.



9.1.2 CONJUGACIÓN


Este proceso se lleva a cabo si la célula presenta el plásmido F, que contiene la información genética para formar pili, puentes que sirven de unión citoplásmica entre dos bacterias. La célula que presenta el plásmido se denomina F+; la célula que no lo contiene se llama F-. La bacteria F+ (donadora de información) se une a una bacteria F- (receptora) mediante uno de sus pili.
A través de él introduce una hebra del plásmido F, de forma que la bacteria F- se convierte en bacteria F+.En ocasiones el plásmido se introduce en el anillo del ADN bacteriano. Entonces, la bacteria donadora se denomina Hfr (High frequency of recombination). De esta forma la bacteria Hfr puede donar a otras células cualquier gen de su ADN.
  • Se produce cuando dos bacterias tienen contacto entre ellas para intercambiar material genético.
  • Así se transmiten plásmidos, y otros elementos.
  • Durante la conjugación las bacterias donadoras poseen una estructura, conocida como '' pili'' en gram negativos, lo cual hace contacto con la célula receptora.
  • Pasa una cadena de los plásmidos a la bacteria receptora quedando una en la bacteria donadora.
  • Los plásmidos pueden adquirir genes de resistencia por conjugación ( transposones e integrones


9.1.3 TRANSDUCCIÓN


Cuando una célula es atacada por un virus bacteriófago, la bacteria genera nuevas copias del ADN vírico. En la fase de ensamblaje se pueden introducir fragmentos de ADN bacteriano en la cápsida del virus. Los nuevos virus ensamblados infectarán nuevas  células. Mediante este mecanismo, una célula podrá recibir ADN de otra bacteria e incorporar nueva información.
Los bacteriófagos son virus que parasitan bacterias. Tienen una estructura compleja formada por una cabeza, que contiene el material genético, y una cola que consta de unas fibras con las que se anclan a la superficie bacteriana. El material genético del bacteriófago pasa desde la cabeza, a través de la cola, hasta el interior de la bacteria. El material genético del virus se integra dentro del material genético bacteriano y se replica. De esta manera el virus se reproduce y forma nuevos bacteriófagos que acaban provocando que la bacteria se destruya y estalle.
  • Transferencia de información genética de una célula a otra através de un virus.
  • Estos virus se denominan bacteriofagos o fagos.
  • Penetran las membranas y la pared celular de la bacteria para inyectarle su material genético.
  • Durante la replicación del fago, éste puede llevarse material genético de la bacteria huesped,tanto plásmidos como material cromosómico.Luego salen de la bacteria, e infectan a otras, a las cuales les transmite e integran el DNA que llevan.



9.1.5 TRANSFECCION



Es una técnica empleada para introducir fragmentos de ADN adicional en células de mamíferos. El vehículo que transporta el nuevo ADN es un virus capaz de infectar a la célula. La información genética del virus es modificada previamente, sustituyendo genes que codifican proteínas implicadas en la virulencia y en la replicación del virus por genes de interés que se desea insertar en el mamífero. En muchos casos se transfectan genes que codifican proteínas con función terapéutica o genes necesarios para restaurar una deficiencia génica. El ADN modificado se conoce como ADN recombinante. Conviene además incluir en el ADN recombinante un gen que permita la identificación y selección de aquellas células de mamífero que lo hayan incorporado. Muchas veces el gen de selección es un gen que proporciona resistencia a un antibiótico al que la célula de mamífero sea sensible. La introducción correcta del ADN recombinante permitirá la producción de la proteína de interés en el mamífero.



9.2 MECANISMOS DE TRANSFERENCIA ARTIFICIAL:
9.2.1 FÍSICOS

Son  técnicas como la microinyección con una fina aguja de cristal y la electroporación (exposición de las células aun choque eléctrico).

La microinyección: Es una técnica muy potente y eficaz, ya que 1 de cada 5 células consigue incorporar el DNA foráneo de forma permanente. El problema de esta técnica es que exclusivamente se puede inyectar una célula cada vez, y por tanto no es el más recomendable para una terapia médica debido a que es demasiado laboriosa como para obtener un número de células indicadas. Este método que se emplea en la introducción del DNA recombinante en las células embrionarias en el proceso de obtención de animales transgénicos.


La electroporación: Es una técnica que crea o que dota a la membrana de cierta permeabilidad al DNA durante unos pocos segundos debido a una descarga eléctrica. Si la célula o grupo de células sometidas, a dicho choque eléctrico están sumergidas en un medio rico en plásmidos, alguno de ellos puede penetrar en una célula. El problema que suscita este método es que los choques eléctricos no pueden producir los efectos deseados en algunas células y dañarlas o matarlas debido a esta causa.


La biobalística: Es una técnica basada en principios físicos que permite literalmente disparar genes a las plantas. Para ello, el ácido nucleico que codifica los genes de interés se deposita en minúsculas partículas de oro u tungsteno, las que posteriormente son impulsadas por una fuerte columna de un gas (generalmente helio), hasta impactar los tejidos blancos de la especie a transformar. De esta manera, al penetrar las micropartículas la célula blanco, estas alcanzan el núcleo y depositan el ADN que portan transformando la célula con un nuevo gen





9.2.2 QUÍMICOS

Método del fosfato cálcico: Esta basado en la obtención de un precipitado entre el cloruro de calcio y el DNA en una solución salina de fosfatos. En esta situación co-precipitan formando unos agregados que son endocitados/fagocitados por las células. Aparentemente el agregado con calcio protege al DNA de la degradación por las nucleasas celulares. El tamaño y la calidad del precipitado es crítico para el éxito del proceso, que se ve afectado por factores tales como pequeños cambios en el pH de la solución. 


Método del DEAE dextrano: Es la obtención de complejos entre la resina DEAE y el DNA. Los polímeros de DEAE dextrano o polybreno tienen una carga que les permite unirse a las muy negativamente cargadas moléculas de DNA. El DNA acomplejado se introduce en las células mediante choque osmótico mediante DMSO o glicerol. El uso de DEAE dextrano se limita a las transfecciones transientes. 


Método DNA desnudo: El DNA desnudo (técnica en fase altamente experiemtal) es incapaz de entrar en una célula y aún consiguiendo entrar en ellas es rápidamente degradado. La línea de investigación busca incorporar esas secuencias de DNA a un transportador, que le encierra y le lleva hasta la célula Diana en dónde a través de interacciones de membrana se asocia con ella para entregar el material al interior.


Método Péptidos fusiogénicos: Los  péptidos fusiogénicos surgen en una linea de trabajo que nos permita paliar aquellas características del DNA desnudo que nos impiden la entrada. Estos péptidos fusiogénicosa se utilizan para compactar DNA. y de este modo adoptan DNA con proteínas ricas en cargas +, del tipos Histonas. Esto supone una condensación considerable, (visible con MET) ya que el DNA aparece en la forma de partículas de 50-150 nanometros, pero sólo un cierto grado de condensación permite que 1 transportador incluya 1 molécula de DNA. Asimismo la reducción de tamaño del DNA hasta unos 20 nanometros facilitaría el paso a la célula y hasta el núcleo, incrementando su protección contra las nucleases citoplasmáticas. En el proceso de penetración celular, los transportadores sintéticos (si su carga neta es +) interactuan con Aminoazucares de la Membrana plasmáticacon (carga -) para producir la incorporación a la célula en forma de endosomas. Por tanto tenemos un problema más a superar.

Método  de Liposomas:  Los liposomas estan formados por DNA y lipidos no inmunogénicos cargados positivamente (lípidos cationicos). Inicialmente se empezó a trabajar con lípidos no inmunogénicosados, ya que la organización de los lípidos en bicapa podría facilitar el paso a través de la membrana citoplasmática. Aunque estos lípidos no englobaban mucho DNA.
A raiz de esto se crearon los liposomas que superan el problema de la compactación debido a que el DNA se contornea como consecuencia de las cargas positivas de lípidos.







TAREA: LAS BACTERIAS DE DIFERENTES ESPECIES PUEDEN COMPARTIR PLASMIDOS?? (TRANSFORMACIÓN) SI, NO Y POR QUE?? EJEMPLOS:



SI.... ¡¡POR QUE!!.....
Los plásmidos conjugativos forman parte del ADN bacteriano y los plásmidos sólo pueden existir y multiplicarse dentro de una célula. Estos plásmidos aprovechan la maquinaria celular y a continuación se trasladan a otra célula. De este modo la bacteria consigue propagarse. Determinaron el origen de varios plásmidos IncP-1 y su movilidad entre distintas especies de bacterias.  Los plásmidos IncP-1 son "vehículos" de enorme potencia para transportar genes de resistencia a antibióticos entre especies de bacterias. Por tanto no importa demasiado en qué entorno, parte del mundo o especie bacteriana surge la resistencia a antibióticos. Los genes de resistencia podrían desplazarse con facilidad de un entorno de desarrollo original a bacterias capaces de infectar a humanos mediante plásmidos IncP-1 u otros plásmidos con propiedades similares que ejercieran de "vehículos". Los plásmidos se replican y se transmiten independientemente del cromosoma bacteriano. La replicación y la transcripción de los plásmidos dependen de las proteínas de su hospedero.






CONCLUSIÓN:
Hemos concluido que en esta unidad establecimos todos los puntos indicados vistos por el profesor y analizados por nosotros el cual comprendimos como se lleva acabo la transferencia del material genetico asi como sus mecanismos de transferencia natural y artificial. 


BIBLIOGRAFIA:
  •     http://www.ugr.es/~eianez/Microbiologia/17transforma.htm
  •      http://www.revista.unam.mx/vol.7/num11/art89/nov_art89.pdf
  •      http://microral.wikispaces.com/3.+Gen%C3%A9tica+bacteriana.
  •  http://comunidadbiomedica.blogspot.mx/2011/05/bacterias-y-resistencia-antibioticos-la.html
  •      http://es.scribd.com/doc/75710578/Biologia-Taller





lunes, 28 de mayo de 2012

UNIDAD :VIII REGULACIÓN DE LA EXPRESION GENETICA


SEP                                SNEST                            DGEST



UNIDAD VIII: 

REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GENÉTICA



QUE PRESENTA:

Arisbeth Salgado Mendoza
09930054


Lic. BIOLOGIA VI "A"


Ciudad Altamirano, Gro. México. MAYO del 2012







INTRODUCCIÓN:


Los organismos multicelulares complejos están compuestos de diferentes tejidos cuyas características individuales dependen de las proteínas específicas expresadas por sus tipos celulares. La diferenciación,  el desarrollo y la funcionalidad  de los tejidos específicos dependen  del conjunto de proteínas selectivamente expresadas por cada célula. Estas proteínas expresadas en forma diferencial pueden  funcionar como componentes estructurales de las células, enzimas reguladoras del metabolismo, factores de transcripción,  receptores celulares, componentes intracelulares de señalización, etc.
La expresión incorrecta de tales proteínas, su expresión en lugares equivocados, a destiempo, o la producción en cantidades anormales de proteínas específicas o de proteínas de función anómala subyace a toda patología celular de base genética.
Por consiguiente el conocimiento de los mecanismos de regulación de la expresión proteica en eucariontes  contribuirá al conocimiento de las bases moleculares de diversas patologías.

La transmisión de la información genética (transcripción), posibilita la formación de proteínas, cuyas funciones van a caracterizar la actividad y morfología de las células; pero la regulación de los tipos y cantidades de proteínas presentes en cada momento constituye un tema de tanta relevancia como el propio hecho de la síntesis. Las células son estructuras muy organizadas cuyas moléculas se ordenan de forma rigurosa.
En un organismo no se necesitan todos  los  productos  génicos  de  forma  simultánea,  ni  a  los mismos niveles, con lo cual el sistema de regulación va a servir para ajustar el uso del depósito de información de los ácidos nucleicos a los requerimientos de cada célula o de cada organismo. A la regulación de la síntesis de las macromoléculas se la denomina regulación de la expresión genética o génica.
En un organismo procariota, muy dependiente de las condiciones de su entorno, la regulación debe permitirle responder rápidamente a las modificaciones medioambientales con el objeto de garantizar su supervivencia. La utilización de una parte u otra de su dotación genética le facilitará adaptarse adecuadamente a su entorno. En una célula de Escherichia coli  se  pueden  medir niveles diferentes de concentraciones proteicas; hay proteínas muy escasas, que se encuentran en número de una decena; y hay proteínas muy abundantes, de las que pueden medirse miles de copias. En una célula de mamífero pueden existir 1010 moléculas  de  proteínas pertenecientes a unos 10.000 a 20.000 tipos diferentes. Esta enorme variación entre el número y tipo de moléculas presentes es posible por los cambios controlados en la producción y en la degradación de los productos génicos.
La diferenciación celular que existe en los organismos pluricelulares, se fundamenta en que aunque todas las células disponen del mismo ADN, se distinguen unas de otras porque sintetizan distintos tipos de moléculas de ARN y de proteínas. Si se compara un eritrocito y una neurona las diferencias son tan amplias que resulta difícil pensar que ambas comparten la misma dotación génica. Y si, además, se observa que la diferenciación es un proceso irreversible, aún se hace más indispensable el proceso de regulación de la expresión de diferentes genes.
Esta regulación puede llevarse a cabo en cualquier etapa de la síntesis o de la maduración de las macromoléculas, y atendiendo a muchas variables se desarrollará en el punto más adecuado. La vía que conduce desde el ADN hasta las proteínas está formada por múltiples etapas, y existen pruebas de que todas ellas se pueden controlar. Uno de los puntos de regulación más importantes se realiza a nivel de la transcripción, ya que al ser ésta la etapa inicial de trasvase de información genética se consigue el control en el inicio, lo que supone la mejor pauta de actuación, ya que se consigue el máximo ahorro energético.
Existen una serie de genes que se expresan constantemente, denominándoseles genes constitutivos, el producto de su expresión son moléculas necesarias  de  forma  continua  en  todos  los momentos de existencia de la célula o del organismo. Por otro lado, existen otros genes, denominados regulables, cuya expresión estará ajustada por las necesidades variables de la célula, aumentando o disminuyendo la expresión génica según se necesite aumentar o disminuir la concentración del producto génico.


OBJETIVOS:

  • Integrará los conocimientos anteriores con los mecanismos de regulación genética para entender a nivel molecular los procesos metabólicos.

METODOLOGÍA:

Con el maestro conoceremos paso a paso el desarrollo de esta unidad la cual presentare en este contesto blooger. definiremos como se da la regulación de la expresion genética a diversos órganos celulares (procariontes y eucariotes).



8.1 NIVELES DE REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GENÉTICA


Los genes deben ser regulados ya que no es necesario que se expresen (Transcriban y Traduzcan) todo el tiempo sino cuando es necesario.
Genes constitutivos y genes regulados. No todos los genes se expresan simultáneamente ni al mismo nivel.
  • Genes constitutivos: los que se expresan al mismo nivel independientemente de las condiciones ambientales
  • Genes regulados: aquellos que se expresan a distintos niveles (o no se expresan) dependiendo de las condiciones ambientales.

Los objetivos de la regulación son:

- Armonía estructural, equilibrio celular
- Adaptación: típico de procariotas
- Diferenciación: típico de eucariotas pluricelulares.

Casi cada uno de los niveles de los que depende la expresión de información genética puede estar sometido en principio a algún tipo de regulación, aunque el más frecuente es sobre la transcripción.

1)      Nivel transcripcional y sobre el ARNm
a)      A nivel del inicio de la transcripción
i)        sustitución del factor s de la ARN-polimerasa
ii)       por interacción de proteínas regulatorias sobre secuencias de ADN cercanas al promotor:
(1)   fenómenos de inducción génica
(2)   fenómenos de represión génica

A su vez, estos fenómenos pueden realizarse por:


mecanismos de control positivo


mecanismos de control negativo
b)      Terminación prematura de la transcripción: fenómenos de atenuación de la transcripción.
c)      Procesamiento de ARN (casos muy raros en procariotas)

2)      Nivel traduccional. Ejemplos:
a)      regulación de la síntesis de las proteínas ribosómicas.
b)      regulación por ARN antisentido, que interfiere con la traducción del ARNm

3)      Nivel postraduccional. Aquí ya no estamos ante mecanismos puramente de regulación genética. Algunos ejemplos: degradación de proteínas y modificación covalente de proteínas (p. ej., fosforilación). Regulación alostérica por retroalimentación (feed-back) de la actividad de las proteínas enzimáticas.

4)      Sistemas globales de regulación
Cuando varios operones están regulados coordinadamente por un mismo tipo de estímulos, constituyen una red de regulación que se suele denominar con el nombre deregulón (p. ej., el regulón de los operones spo de la esporulación en las especies del género Bacillus).
Casi todos los productos de genes bacterianos están regulados en al menos uno de estos niveles, y a menudo lo están en varios niveles al mismo tiempo.
Como veremos enseguida, muchos de estos mecanismos se disparan en el interior celular debido a pequeñas moléculas que informan a la bacteria de un determinado cambio ambiental.



8.2 REGULACIÓN DE LA TRANSCRIPCIÓN EN ORGANISMOS PROCARIOTICOS.


En las bacterias, a pesar de ser organismos unicelulares, también es necesario regular la expresión de los genes adaptándola a las necesidades ambientales. Es un principio de economía celular el que la expresión de los genes este regulada según las circunstancias celulares. Un buen ejemplo de esta situación en bacterias es la regulación de las enzimas implicadas en el metabolismo de los azúcares. Las bacterias pueden emplear para obtener energía distintas fuentes de carbono, como la glucosa, lactosa, galactosa, maltosa, ramnosa y xilosa. Existen enzimas capaces de introducir cada uno de estos azúcares en la bacteria y enzimas capaces de romperlos para obtener energía. Lógicamente, sería un despilfarro energético producir simultáneamente todos los enzimas necesarios para metabolizar los diferentes azúcares mencionados. Por consiguiente, sería mucho más económico para la célula producir solamente las enzimas necesarias en cada momento, es decir, si en el medio en el que vive la bacteria la principal fuente de carbono es la lactosa, solamente se expresarían los genes necesarios para metabolizar la lactosa, mientras que los otros genes no se expresarían. Por tanto, es esencial que exista un mecanismo de regulación de la expresión génica, de manera que los genes se expresen cuando sea necesario.
La regulación de la producción de proteínas (síntesis de proteínas) considerando el proceso en su conjunto, puede llevarse a cabo en tres niveles:
·         Replicación
·         Transcripción
·         Traducción.
De los tres niveles de regulación, uno de los mejor conocidos actualmente es la regulación durante la transcripción. Aunque la regulación de la transcripción en eucariontes es más compleja que en bacterias, muchos de sus aspectos son similares. Por tanto, comenzaremos por el estudio de la regulación de la transcripción en bacterias.




8.4.1 OPERON DE LACTOSA (CONTROL POSITIVO)


El operón lactosa es un operón requerido para el transporte y metabolismo de la lactosa en la bacteria Escherichia coli, así como en algunas otras bacterias entéricas. Presenta tres genes estructurales adyacentes, un promotor, un terminador y un operador. El operón lac es regulado por varios factores, incluyendo la disponibilidad de glucosa y de lactosa. La regulación génica del operón lac fue el primer mecanismo regulatorio de la expresión genética en ser elucidado, y es utilizado a menudo como un ejemplo clásico de la regulación génica en procariotas.
Sistema del operón lactosa.
Un ejemplo claro de regulación de la expresión genética en procariotas, es el que ocurre en el operón lac. En E. Coli se requieren dos enzimas para la metabolización de la lactosa, la lactosa permeasa, una enzima de membrana que permite el transporte de la lactosa al interior celular y la -Galactosidasa, que cataliza la ruptura del enlace -1,4 entre la galactosa y la glucosa. La lactosa se degrada mediante rutas catabólicas para la obtención de energía, pero si en el medio no hay lactosa estas dos enzimas no son necesarias.
La expresión de estas dos enzimas es inducible por lactosa. ¿Cuál es el mecanismo de esta regulación?
-          El sistema de utilización de lactosa por E. coli consta de dos clases de componentes (Figura 1). Genes estructurales que codifican las enzimas -galactosidadas (gen LacZ),  permeasa (gen Lac Y) y transacetilasa que solo se utiliza en el metabolismo de ciertos -galactosidos diferetes de la lactosa (gen Lac A), necesarias para el transporte y degradación de lactosa. Y genes reguladores, el gen Lac I, el promotor lac P y el operador Lac O y el sito CRP). Menos el Lac I, el resto de genes componen  una región del DNA que denominamos operón lac. Además, los genes estructurales están codificados en un solo mRNA policistrónico.


El gen Lac I sintetiza una proteína llamada represor o inhibidor que se une al operador Lac O de forma que cuando la RNA polimerasa se una al promotor no pueda continuar la transcripción. De tal forma que el sistema se encuentra normalmente reprimido y las proteínas necesarias para metabolizar la lactosa no se sintetizan (Figura 2a). En presencia de lactosa, un derivado de ésta, la alolactosa, se une al represor cambiándolo conformacionalmente y haciendo que no tenga afinidad por el operador (la alolactosa actúa como inductor), cuando esto ocurre el operador queda libre y la RNA polimerasa puede realizar la transcripción de los genes. Se trata, por tanto, de una regulación negativa pues todas las órdenes reguladoras son de prohibición.




No obstante, se observó además que en presencia de lactosa y glucosa en el medio de cultivo no había expresión de las proteínas. Esto parece lógico porque si hay glucosa la bacteria no necesita recurrir a la degradación de lactosa como fuente de carbono, de tal forma que la glucosa debía regular de algún modo el proceso. ¿En que consiste la regulación por glucosa? El efecto de la glucosa está mediado por el AMPc y una proteína llamada proteína receptora de cAMP (CRP) o proteína activadora de catabolitos.

La proteína CRP tiene sitios de unión para el ADN y para el AMPc. El complejo AMPc-CAP se une a una zona cercana al promotor lac, y favorece la unión de la ARN polimerasa al promotor, aumentando la transcripción hasta 50 veces (Figura 3). Se ha demostrado que el AMPc y la CAP contribuyen a al iniciación de la transcripción, ayudando al reconocimiento del sitio de iniciación por la ARN polimerasa.


Los niveles de AMPc están muy relacionados con la concentración de glucosa, a altas concentraciones de glucosa los niveles de AMPc son bajos, lo que impide que éste se una a la proteína CRP, de esta forma la ARN-Pol no puede colocarse en el promotor y se impide la transcripción de los genes metabolizadores de lactosa. La función CRP-AMPc favorece la unión de la ARN polimerasa y actúa como un efector o regulador positivo.
 El AMPc y la CRP están implicados en la regulación de muchos operones, especialmente los que codifican enzimas para el metabolismo de otros azucáres. Una red de operones con un regulador común se conoce con el nombre de regulón.
 De forma que se superponen dos regulaciones, la positiva por el efector glucosa y la negativa por el inductor lactosa que contrarresta el efecto inhibidor del represor sintetizado por LacI. El operón solo se expresa en presencia de lactosa y ausencia de glucosa.

Sistema
Expresión
+ Lactosa
+ glucosa
-
+ Lactosa
- glucosa
+
- Lactosa
+ glucosa
-
- Lactosa
- glucosa
-



8.4.2 OPERON DE TRIPTOFANO (CONTROL NEGATIVO)


El triptófano es un aminoácido cuya síntesis se realiza principalmente en diversos operones. Yanofsky estaba estudiando muy de cerca este operón. Vio que este operón estaba formado por varios genes, además, observó que cuando había una alta concentración de Trp no había expresión de los genes, pero que cuado la célula lo necesita, se expresaban los genes.
Es diferente de la lactosa: si tenemos Trp no necesitamos más enzimas, y si no lo hay sí.
El represor de este operon necesita triptófano para poder actuar. El represor es inactivo de por sí, si se le une Trp se inhibe la transcripción con lo que tenemos un control negativo, y cuando el efector se une al represor para reprimir es un sistema reprimible.
En este operon hay un gen que se inducía, el TrpR+. Se aisló un mutante que tenía diez veces más ARNm, y cuando él fue a mirar a su ARNm descubrió que su mutante tenía una deleción, un atenuador que cuando estaba atenuaba la expresión.
En el ARNm había una zona líder que contenía el atenuador, era un ARNm pequeño que estaba en altas concentraciones. Descubrió que un pequeño péptido correspondiente a esta secuencia se traducía, mirando su secuencia comprobó que había dos Trp, cosa que era rara ya que el trp es un aminoácido muy raro. Si había una baja concentración de triptófano la transcripción continúa. Si los niveles de Trp eran altos, lee rápido y se une al represor

Los elementos del operón trp son en esencia semejantes a los del operón lactosa:

• Genes estructurales: existen cinco genes estructurales en el siguiente orden trpE-trpD-trpC-trpB-trpA.
• Elementos de control: promotor (P) y operador (O). El promotor y el operador están al lado de los genes estructurales y en el siguiente orden: P O trpE-trpD-trpC-trpB-trpA. Curiosamente, las enzimas codificadas por estos cinco genes estructurales actúan en la ruta metabólica de síntesis del triptófano en el mismo orden en el que se encuentran los genes en el cromosoma.
• Gen regulador (trpR): codifica para la proteína reguladora. Este gen se encuentra en otra región del cromosoma bacteriano aunque no muy lejos del operón.
•Correpresor: triptófano.


 Elementos del Operón Triptófano:

Los genes estructurales del operón triptófano se encuentran en el mismo orden que actúan las productos codificados por ellos en la ruta biosintética del triptófano

Orden de los genes estructurales del operón triptófano y ruta de síntesis del triptófano
En ausencia de triptófano, o cuando hay muy poco, la proteína reguladora producto del gen trpR no es capaz de unirse al operador de forma que la ARN-polimerasa puede unirse a la región promtora y se transcriben los genes del operón triptófano.




8.3 REGULACIÓN DE LA TRANSCRIPCIÓN EN ORGANISMOS EUCARIOTES





En el caso de las eucariotas, el proceso se realiza en el núcleo, y es similar al de las procariotas, pero de mayor complejidad. Diferentes ARNp transcriben distintos tipos de genes. La ARNpII transcribe los pre-ARNm, mientras que la ARNpI y ARNpIII transcriben los ARN-ribosomales y ARNt, respectivamente. Los ARNs transcritos son modificados posteriormente. El pre-ARNm,por ejemplo, sufre un proceso de maduración que tras cortes y empalmes sucesivos elimina ciertos segmentos del ADN llamados los intrones para producir el ARNm final. Durante este proceso de maduración se puede dar lugar a diferentes moléculas de ARN, en función de diversos reguladores. Así pues, un mismo gen o secuencia de ADN, puede dar lugar a diferentes moléculas de ARNm y por tanto, producir diferentes proteínas. Otro factor de regulación propio de las células eucariotas son los conocidos potenciadores (en inglés: "enhancers"), que incrementan mucho (100 veces) la actividad de transcripción de un gen, y no depende de la ubicación de éstos en el gen, ni la dirección de la lectura.
Activadores transcripcionales

Los activadores son la proteínas que se van a unir a los elementos distales (SDE y potenciadores) para activar la transcripción. Son específicos de unos pocos promotores —por lo que no estarán en todos los tipos celulares—, reconocen entre 6 y 14 pb en el promotor y suelen tener dos dominios estructurales:
  • El dominio de unión a DNA (DNA binding domain) , que consta de 60 a 100 aminoácidos consecutivos.
  • El dominio de activación de la transcripción que consta de 30 a 100 aminoácidos que no tienen por qué ser consecutivos.
  • La presencia de estos dominios las convierte en proteínas modulares en las que el dominio de unión y el de activación pueden funcionar independientemente.

2.- Coactivadores y correpresores

coactivador si ayuda a activar la transcripción. Un mismo coactivador puede recibir señales de distintos activadores para transmitirlos hacia el complejo del promotor basal.
correpresor si ayuda a inactivar el promotor. Los correpresores pueden tener actividad desacetilasa, con lo que hace que el DNA se una con más firmeza a los nucleosomas, inactivando el promotor porque no puede ser reconocido por los factores generales de transcripción.

3.- Transactivadores

Son aquellos que directamente ejercen su acción interaccionando con el complejo de iniciación formado en el promtor basal, bien sobre la propia polimerasa o, más normalmente, sobre una de las TAF o de los TFII, para activar o reprimir la transcripción, puesto que no son actividades exclulyentes.

Potenciadores

los potenciadores (enhancers o intensificadores). Su función es la de amplificar la transcripción del promtor incluso más de 1000 veces. Los hay específicos del tejido —sólo activan la transcripción de su gen en determinados tejidos—, específicos de la etapa de desarrollo e inducibles por alguna señal externa como hormonas, metales pesados, choque térmico, infección viral, etc. Necesitan la mediación de un coactivador.

Final del formulario

Silenciamiento de genes

La unión inespecífica de proteínas reguladoras es un problema importante en los organismos con genomas grandes. Para combatirla, los eucariotas han hecho que los genes tengan en torno a 5 dianas para proteínas reguladoras diferentes. Esta estrategia es útil para los activadores de la transcripción porque es una estrategia eficiente y ahorra esfuerzo. Una estrategia similar no es factible con los inhibidores de la transcripción, por lo que se da poca regulación por silenciamiento.

El silenciamiento de un gen puede ocurrir por:
  • la inactivación por interacción con un regulador
  • el silenciamiento génico postranscripcional (PTGS, también denominada cosupresión o extinción génica)
  • la metilación del DNA en vertebrados (directamente ligada al superenrollamiento y al silenciamiento).

 Inactivación mediante una proteína reguladora

Se consigue uniendo una proteína reguladora a cualquiera de los distintos elementos que forman los promotores.
Los que reconocen los elementos distales
• El silenciador específico de tejido (tse): se encarga de silenciar en cualquier célula los genes que son específicos de células hepáticas

• Las hormonas esteroideas comentadas anteriormente
• El gen Pit-1

Silenciamiento por metilación

No todos los organismos tienen el DNA metilado. En los mamíferos, el DNA metilado forma heterocromatina a la que no pueden acceder los factores de transcripción. Por tanto, los genes metilados no se pueden transcribir ni tan siquiera residualmente. Se trata de un mecanismo muy eficiente de silenciamiento génico que, además, disminuye la cantidad de DNA que los factores de transcripción y la RNA-polimerasa tienen que rastrear para buscar los promotores.




TAREA: Investigue como se realiza el control genético del "Gen BRCA".



Es un gen humano del tipo del gen supresor de tumores, que regulan el ciclo celular y evitan la proliferación incontrolada.
La proteína BRCA1, producto de este gen, forma parte del sistema de detección y reparación de los daños del ADN. Las variaciones de este gen están implicadas en algunos tipos de cáncer, especialmente el cáncer de mama. El gen BRCA1 está situado en el brazo largo (q) del cromosoma 17, en la posición 21, desde el par de bases 38.449.843 hasta el par de bases 38.530.933.
El concepto de la realización de pruebas genéticas para el cáncer de mama procede del reconocimiento de que existen cúmulos de casos de cáncer de mama en familias, a veces asociados a cáncer de ovario en las mujeres o cáncer de próstata en los varones.
No fue hasta principios de la década de 1990 cuando se describieron dos genes de cáncer de mama de elevada penetrancia. Los oradores estimaron que estos genes, BRCA 1 y 2, explican el mayor riesgo de cáncer de mama y ovario en el 20% al 50% de las familias. Las mujeres portadoras de una estas mutaciones poseen un riesgo de cáncer de mama a lo largo de la vida de hasta el 50% al 80%, y un riesgo de entre el 15% y el 25% de cáncer de ovario. También podría asociarse a estas mutaciones genéticas un riesgo elevado de cáncer de próstata y quizá de otros cánceres, incluyendo el de páncreas. Desde principios de la década de 1990, cuando se describieron los genes BRCA 1 y 2,  no se han identificado nuevos genes de este tipo.
De acuerdo con el Dr. Stratton, sólo se puede atribuir a BRCA 1 y 2  el 20% del riesgo familiar de cáncer de mama. Los genes asociados al cáncer de mama se pueden dividir en uno de los tres tipos siguientes: de riesgo elevado, que comportan un riesgo de 20 a lo largo de la vida; de riesgo moderado, que comportan un riesgo de 5-10 a lo largo de la vida, y los  de bajo riesgo. Para identificar los genes de alto riesgo, se puede emplear el análisis de ligamiento genético en un pequeño número de grandes familias con muchos miembros afectados. Es este tipo de estudio el que condujo a la identificación de los genes BRCA 1 y 2. El gen BRCA 2 se encontró y localizó sin ambigüedades en una única familia de gran tamaño. Se ha propuesto que existen loci de BRCA 3 de riesgo alto a moderado en el cromosoma 8p y 13q21. El Dr. Stratton afirmó que cree que no existe evidencia de un gen de vulnerabilidad de alto riesgo en ninguno de estos dos loci.

http://www.cirugest.com/htm/revisiones/cir09-06/09-06-20.htm




CONCLUSIONES:


con el profesor vimos paso a paso detenidamente los puntos a conocer de como se daba la regulación de la expresión genética en los diferentes tipo de organismos (EUCARIOTICOS y PROCARIOTICOS), en ellos estudiados los operones encontrados en dichas partes.



BIBLIOGRAFIA:
  • http://www.ucm.es/info/genetica/grupod/Operon/Operon.htm#Regulación en bacterias
  • http://www.ugr.es/~eianez/Microbiologia/15regulacion.htm
  • http://www.google.com.mx/url?sa=t&rct=j&q=&esrc=s&source=web&cd=6&ved=0CGEQFjAF&url=http%3A%2F%2Fwww.unioviedo.es%2Fbos%2FAsignaturas%2FFvca%2Fseminarios%2FRegulacindelaexpresingnica.doc&ei=7ta-T5S9FoPQ2wWs4vz_CQ&usg=AFQjCNFwsAR9L-Z7OAnxwJ695Gc8XxXR0Q&sig2=QC1CEdqghFsMKdPyjmL9zQ
  • http://ocw.unican.es/ciencias-de-la-salud/fisiologia-general/materiales-de-clase-1/tema-1.-introduccion-al-estudio-de-la-fisiologia/Tema%208-Bloque%20I-Regulacion%20Genetica.pdf
  • http://www.ramc.cat/composicio/Santiago%20Vidal%20Sivilla.pdf
  • http://www.cienciaybiologia.com/bgeneral/regulacion-expresion-genica-procariotas-virus.htm
  • http://genmolecular.wordpress.com/regulacion-de-la-expresion-genica/