domingo, 10 de junio de 2012

UNIDAD X: TÉCNICAS DE LA BIOLOGÍA MOLECULAR


SEP                          SNEST                   DGEST




UNIDAD X: 



TÉCNICAS DE LA BIOLOGÍA MOLECULAR



QUE PRESENTA:

Arisbeth Salgado Mendoza
09930054


Lic. BIOLOGIA VI "A"


Ciudad Altamirano, Gro. México. JUNIO del 2012







INTRODUCCIÓN:


Se denomina así a todas las técnicas de laboratorio que se usan para aislar ADN o extraerlo en alta pureza, visualizarlo para ver su estado, cortarlo y pegarlo (nacimiento de la Ingeniería genética), amplificar una región en una enorme cantidad de moléculas (clonación de fragmentos en bacterias u otros vectores como virus y PCR), corte de una determinada región con enzimas de restricción para ver si por una mutación se gana o se pierde un sitio de restricción (análisis de mutaciones por RFLP o Restriction fragment lengt polymorphism), que siginifica: diferencias en los tamaños de los fragmentos de restricción debido a polimorfismos en el ADN entre otras.
Todas estas técnicas tiene diversas aplicaciones generalmente en el diagnóstico de enfermedades hereditarias, búsqueda de alelos mas o menos frecuentes asociados a una característica que nos interesa seleccionar, diagnóstico de contaminación bacteriana en alimentos (detección de Escherichi coli 0257, cepas difrenctes de Salmonellas, Mycobacterium sp) diagnóstico viral o de infección viral (HIV, Hpatitis C, PIF, otros), selección de marcadores moleculares para asistir en el mejoramiento genético de una especie, test de paternidad, diganóstico de identidad forense, etc.
La primera técnica que todas las demás necesitan es la extracción del ADN, y para ello es necesario purificarlo desde cualquier tejido aunque usualmente se hace a partir de sangre. Se basa en una serie de lavados de la muestra y agregado de proteinasas que eliminan las proteínas del medio, detergentes para elminar las membranas plasmáticas y luego ir purificando el ADN de esa mezcla de ARN proteínas y restos celulares.


OBJETIVOS: 

  • Conocerá y aplicará las bases moleculares del ADN para su manipulación y en el mejoramiento genético de especies de interés alimenticio, medico y ecológico.


METODOLOGÍA:
En esta unidad vamos a verificar los pasos correspondientes en la unidad así analizarla y el profesor darnos a conocer como se lleva acabo las técnicas de la biología molecular así como los métodos de purificación y análisis de los ácidos nucleicos y sobre todo la técnica de HIBRIDACION.



10.1 MÉTODOS DE PURIFICACIÓN Y ANÁLISIS DE LOS ÁCIDOS NUCLEICOS



La concentración del ADN, éste será utilizado básicamente con el propósito de amplificar determinadas secuencias del mismo mediante PCR.

En ciertos casos la simple detección del fragmento amplificado tiene valor diagnóstico por sí mismo. La metodología empleada para la detección puede ser:

1.      separación y visualización de dicho fragmento en geles adecuados de agarosa o poliacrilamida. En otros casos el valor diagnóstico se obtiene por comparación de la movilidad del fragmento en un gel, respecto a un fragmento de características conocidas.

2.      detección del fragmento amplificado mediante ELISA con revelado colorimétrico o quimioluminiscente.

Por el contrario, en otros casos el valor diagnóstico se alcanza una vez que el fragmento amplificado se analiza mediante cualquiera de las siguientes técnicas:

1.      Corte con enzimas de restricción. Los fragmentos generados en la restricción se separan en geles de agarosa o poliacrilamida adecuados.

2.      Hibridación.  Los fragmentos generados en el PCR se separan en  gel de agarosa, se transfieren a un soporte adecuado (nitrocelulosa, nylon), y finalmente se hibridan con un ADN sonda marcada.

3.      Secuenciación.  Los fragmentos generados durante la reacción de secuenciación se separan en geles desnaturalizantes de poliacrilamida 






10.2 TÉCNICAS DE HIBRIDACION



Las técnicas de hibridación se parte de dos poblaciones de ácidos nucléicos: un conjunto homogéneo de ácidos nucléicos de secuencia conocida que actúa como sonda y otro conjunto heterogéneo de ácidos nucléicos de secuencia desconocida donde queremos detectar la secuencia diana. Una de ellas debe estar marcada. Si lo está la sonda, la hibridación es estándar. Si lo está la diana, la hibridación es reversa. Los ácidos nucléicos de partida son de cadena sencilla, bien procedentes de ADN clonado y fragmentado por enzimas de restricción, bien oligonucleótidos sintéticos. La hibridación puede producirse en medio líquido o sobre un soporte sólido, como nitrocelulosa, al que se encuentra unida una de las dos poblaciones de ácidos nucléicos. En la hibridación estándar sería el ADN diana el que iría unido al soporte sólido, mientras que en la hibridación reversa sería la sonda. Durante la hibridación se produce la unión de las moléculas diana con las moléculas sonda. Esta unión depende de la complementariedad de bases. Se pueden adaptar las condiciones para conseguir la especificidad de secuencia requerida para que se produzca la hibridación. Así, aumentando la fuerza iónica (por ejemplo, la concentración de cloruro sódico NaCl) o disminuyendo la temperatura se permite la hibridación aunque existan algunas bases no complementarias. Por el contrario un aumento de la temperatura o una disminución de la fuerza iónica producen una hibridación más específica que tolera menos fallos en la complementariedad de las secuencias a hibridar. Estas condiciones varían según el objetivo de la prueba: Así, por ejemplo, comparar ADN de especies diferentes necesita condiciones relajadas, pero identificar mutaciones puntuales en un gen necesita condiciones que fuercen una hibridación muy específica. 
La hibridación es la base de muchas técnicas moléculares, como en la PCR (reacción en cadena de la polimerasa), Northern Blot, Southern Blot, microarrays de ADN, hibridación in situ o screening de genotecas. Su uso extendido en diagnóstico molecular abarca el diagnóstico de enfermedades, la identificación de microorganismos patógenos, el análisis de perfiles de expresión génica, la localización de genes en cromosomas, la detección de ARNm en tejidos in situ o la comparación de especies de patógenos.



10.3 TÉCNICAS DE CLONACION DE GENES


FASES
1. Preparación del gen
2. Inserción en el vector
3. Transformación de la célula hospedadora
4. Detección de genes clonados
5. Optimización de la expresión de los genes clonados

Consiste en la obtención de un gran número de fragmentos idénticos a partir de uno original. Para ello se aísla primero el fragmento de DNA que se quiere clonar, se liga a un transportador o vector (plásmidos, fagos , cósmidos etc..) que tras introducirlo dentro de una célula va a permitir su replicación por cultivo. Una vez replicado considerablemente se recupera junto con el vector correspondiente y posteriormente se le separa del vector, obteniendo como resultado un gran número de copias del fragmento de interés.


10.4 PRUEBA DE PCR EN EL DIAGNOSTICO DE ENFERMEDADES

La reacción en cadena de la polimerasa (PCR: polymerase chain reaction) es una técnica de amplificación de secuencias de DNA in vitro.

Pasos en la PCR
KLENOW
• Desnaturalización 100oC
• Unión cebadores y polimerización 37oC Taq POLIMERASA
• Desnaturalización 95oC
• Unión cebadores (45-55oC) Tm
• Polimerización 72oC

Elementos de la PCR
• DNA Molde
• Cebadores (oligonucleótidos)
• DNA polimerasa termoestable
• Desoxinucleótidos trifosfatos
• Tampón de reacción
• pH
• Cationes divalentes
• Cationes monovalentes

Aplicaciones
• Clonaje de genes
• Diagnóstico
• Evolución molecular
• Cuantificación de mRNAs
• Secuenciación
• Localización de AN in situ
• Forense
• Otras

Uno de los argumentos mayores contra la hipótesis VIH=SIDA es que cuando se utilizan métodos tradicionales de detección de virus, el VIH nunca ha sido hallado en cantidades significativas en personas con SIDA. Puesto que se precisan millones o miles de millones de copias de un virus para enfermar, un problema para la hipótesis VIH=SIDA era que, incluso usando la PCR estándar (normal), los investigadores no podían encontrar en las personas con SIDA mucha cantidad de VIH, si es que encontraban alguna. Para resolver esta paradoja, los autores de los artículos de la nueva «carga viral» salieron con dos nuevas modificaciones de la PCR, de las cuales afirmaban que eran mucho más eficaces para encontrar el VIH. Estas fueron la PCR-QC y la PCR de ADN ramificado (b-DNA PCR). Y de repente, -¡eureka!- hallaron miles de millones de copias del VIH.



10.7 TECNOLOGÍA DEL ADN RECOMBINANTE

ADN recombinante es una molécula que proviene de la unión artificial de dos fragmentos de ADN. Por lo tanto, la tecnología de ADN recombinante es el conjunto de técnicas que permiten aislar un gen de un organismo, para su posterior manipulación e inserción en otro diferente. De esta manera podemos hacer que un organismo (animal, vegetal, bacteria, hongo) o un virus produzca una proteína que le sea totalmente extraña.
Estas técnicas se emplean normalmente para la producción de proteínas en gran escala, ya que podemos hacer que una bacteria produzca una proteína humana y lograr una superproducción, como en el caso de la insulina humana, que actualmente es producida por bacterias en grandes recipientes de cultivo, denominados biorreactores. Como las bacterias se multiplican muy rápidamente y pueden expresar grandes cantidades de proteínas, es posible lograr una sobreproducción de la proteína deseada. A esto justamente se dedica labiotecnología, es decir a la utilización de organismos vivos o de sus productos con fines prácticos.
El desarrollo de la tecnología del ADN recombinante fue posible gracias a varias líneas de investigación:
1) el conocimiento de las enzimas de restricción.
 2) la replicación y reparación de ADN.
 3) la replicación de virus y plásmidos.
 4) la síntesis química de secuencias de nucleótidos. 

Las enzimas de restricción son endonucleasas que clivan (hidrolizan) en una forma específica puentes fosfodiéster 3' - 5' entre pares de bases adyacentes en la doble cadena de DNA.
Las enzimas de restricción reciben su nombre de la bacteria de la que fueron aisladas por ejemplo: EcoRI de Escherichia coli, BamHI de Bacillus amyloliquefaciens. Las tres primeras letras en el nombre de la enzima, corresponden la primera al genero (E) y las otras dos a la especie (co). Éstas pueden ir seguidas por la designación de una cepa ( R) y un número romano (I) para indicar el orden del descubrimiento.
El tipo más común de enzimas de restricción (tipo II) usado en la tecnología del DNA recombinante proviene de bacterias y no requiere fuente de energía para el clivaje del puente. Requiere en cambio iones Mg++ para la unión específica al DNA y posterior clivaje.
Otras enzimas de restricción clivan palíndromos de DNA de 4 o 6 pb. Algunas otras enzimas de restricción clivan una secuencia única. Estas enzimas que reconocen la misma secuencia se llaman ISOCHIZOMERS.
Las enzimas de restricción de tipo OO son parte de un sistema de restricción / modificación en la bacteria. La misma tiene un “sistema” de protección contra sus propias enzimas de restricción a través de una enzima acompañante que metila nucleótidos de su ADN y los convierte en un sustrato inadecuado para ser digerido en las secuencias de 6 reconocimientos. Por esto es que las ADN metilasas de sitio específico y las enzimas de restricción siempre están por pares en una bacteria.





CONCLUSIÓN:
En esta unidad vimos como se llave a cabo las técnicas de la biología molecular, así como los métodos de purificación y análisis de los ácidos nucleicos, la técnica de HIBRIDACION, etc... en esos pasos el profesor nos explico detenidamente para así poder nosotros interpretar muy bien..


BIBLIOGRAFIA:
  • http://free-news.org/cjohns02.htm
  • http://aportes.educ.ar/biologia/nucleo-teorico/influencia-de-las-tic/tecnologia-del-adn recombinante/que_es_la_tecnologia_del_adn_r.php
  • http://www.med.unne.edu.ar/catedras/bioquimica/pdf/dnarec07.pdf

miércoles, 6 de junio de 2012

UNIDAD IX: TRANSFERENCIA DEL MATERIAL GETICO


SEP                        SNEST                 DGEST




UNIDAD IX: 



TRANSFERENCIA DEL MATERIAL GENETICO



QUE PRESENTA:

Arisbeth Salgado Mendoza
09930054


Lic. BIOLOGIA VI "A"


Ciudad Altamirano, Gro. México. MAYO del 2012







INTRODUCCIÓN:




El mecanismo de reproducción habitual en bacterias es la bipartición. Mediante este mecanismo se obtienen dos células hijas, con idéntica información en el ADN circular, entre sí y respecto a la célula madre, y de contenido citoplásmico celular similar. Las células hijas son clones de la progenitora. Por este sistema de reproducción se puede originar una colonia de células con material idéntico; sin embargo, esto no ocurre debido al alto índice de mutaciones que se producen en las bacterias.
La bipartición se produce cuando la célula ha aumentado su tamaño y ha duplicado su ADN. El ADN bacteriano  se une a un mesosoma, que separa el citoplasma en dos y reparte cada copia del ADN duplicado a cada lado. Al final del proceso el mesosoma se ha unido al resto de la membrana plasmática y se han formado dos células hijas genéticamente iguales.

Reproducción parasexual

En ocasiones, la célula bacteriana tiene la oportunidad de intercambiar información genética por procesos de recombinación. Estos procesos son la transformación, la transducción y la conjugación. En estos procesos no hay formación de ningún tipo de gametos, por lo que no es reproducción sexual. 

  • La transferencia es unidireccional, es decir, tiene una determinada polaridad, existiendo células donadoras y células receptoras.

  • La transferencia del genomio de una célula a otra no suele ser total, sino parcial.

  • Parte del material genético, una vez introducido en la célula receptora, sufre inmediatamente un fenómeno de recombinación con el genomio de la receptora. El resto del material de la donadora o no se replica, o se ve destruido.

  • Como se puede deducir, tras los procesos de transferencia genética bacteriana, no surge una diploidía total (como es el caso en eucariotas), sino una diploidíaparcial, que recibe el nombre de merodiploidía. Las células bacterianas diploides parciales reciben la denominación de merodiploides o merozigotos. Además, la merodiploidíasuele ser transitoria.


            Este tipo de intercambio genético unidireccional, con diploidía transitoria parcial, se denomina meromixia, para distinguirlo de la reproducción sexual de eucariotas.

El genomio de la célula receptora se suele denominar endogenote.
La porción de genomio de la cél. donadora que se transfiere se llama exogenote.


OBJETIVOS:


  • Entenderá las bases moleculares del intercambio del material genético entre los diferentes seres vivos para su posterior aplicación.

METODOLOGÍA:

En esta unidad fuimos viendo detenidamente los subtemas y así el profesor iba explicando detalladamente los pasos que se dan a la transferencia del material genético y así posteriormente nosotros y vamos notando lo mas importante o sobresaliente de eso lo cual lo identificare en dicho blogger..


9.1 MECANISMOS DE TRANSFERENCIA NATURAL
9.1.1 TRANSFORMACIÓN



Fragmentos de ADN que pertenecían a células lisadas (rotas) se introducen en células normales. El ADN fragmentado recombina con el ADN de la célula receptora, provocando cambios en la información genética de ésta.
  •   Las bacterias se transmiten material genético através de DNA libre en el medio,elementos episomiales.
  •  La bacteria receptora tiene mecanismos para captar el DNA a través de sus envolturas externas e introducirlo en su cromosoma.
  •   Los genes intracrosomales se recombinan dando lugar a genes mosaico.



9.1.2 CONJUGACIÓN


Este proceso se lleva a cabo si la célula presenta el plásmido F, que contiene la información genética para formar pili, puentes que sirven de unión citoplásmica entre dos bacterias. La célula que presenta el plásmido se denomina F+; la célula que no lo contiene se llama F-. La bacteria F+ (donadora de información) se une a una bacteria F- (receptora) mediante uno de sus pili.
A través de él introduce una hebra del plásmido F, de forma que la bacteria F- se convierte en bacteria F+.En ocasiones el plásmido se introduce en el anillo del ADN bacteriano. Entonces, la bacteria donadora se denomina Hfr (High frequency of recombination). De esta forma la bacteria Hfr puede donar a otras células cualquier gen de su ADN.
  • Se produce cuando dos bacterias tienen contacto entre ellas para intercambiar material genético.
  • Así se transmiten plásmidos, y otros elementos.
  • Durante la conjugación las bacterias donadoras poseen una estructura, conocida como '' pili'' en gram negativos, lo cual hace contacto con la célula receptora.
  • Pasa una cadena de los plásmidos a la bacteria receptora quedando una en la bacteria donadora.
  • Los plásmidos pueden adquirir genes de resistencia por conjugación ( transposones e integrones


9.1.3 TRANSDUCCIÓN


Cuando una célula es atacada por un virus bacteriófago, la bacteria genera nuevas copias del ADN vírico. En la fase de ensamblaje se pueden introducir fragmentos de ADN bacteriano en la cápsida del virus. Los nuevos virus ensamblados infectarán nuevas  células. Mediante este mecanismo, una célula podrá recibir ADN de otra bacteria e incorporar nueva información.
Los bacteriófagos son virus que parasitan bacterias. Tienen una estructura compleja formada por una cabeza, que contiene el material genético, y una cola que consta de unas fibras con las que se anclan a la superficie bacteriana. El material genético del bacteriófago pasa desde la cabeza, a través de la cola, hasta el interior de la bacteria. El material genético del virus se integra dentro del material genético bacteriano y se replica. De esta manera el virus se reproduce y forma nuevos bacteriófagos que acaban provocando que la bacteria se destruya y estalle.
  • Transferencia de información genética de una célula a otra através de un virus.
  • Estos virus se denominan bacteriofagos o fagos.
  • Penetran las membranas y la pared celular de la bacteria para inyectarle su material genético.
  • Durante la replicación del fago, éste puede llevarse material genético de la bacteria huesped,tanto plásmidos como material cromosómico.Luego salen de la bacteria, e infectan a otras, a las cuales les transmite e integran el DNA que llevan.



9.1.5 TRANSFECCION



Es una técnica empleada para introducir fragmentos de ADN adicional en células de mamíferos. El vehículo que transporta el nuevo ADN es un virus capaz de infectar a la célula. La información genética del virus es modificada previamente, sustituyendo genes que codifican proteínas implicadas en la virulencia y en la replicación del virus por genes de interés que se desea insertar en el mamífero. En muchos casos se transfectan genes que codifican proteínas con función terapéutica o genes necesarios para restaurar una deficiencia génica. El ADN modificado se conoce como ADN recombinante. Conviene además incluir en el ADN recombinante un gen que permita la identificación y selección de aquellas células de mamífero que lo hayan incorporado. Muchas veces el gen de selección es un gen que proporciona resistencia a un antibiótico al que la célula de mamífero sea sensible. La introducción correcta del ADN recombinante permitirá la producción de la proteína de interés en el mamífero.



9.2 MECANISMOS DE TRANSFERENCIA ARTIFICIAL:
9.2.1 FÍSICOS

Son  técnicas como la microinyección con una fina aguja de cristal y la electroporación (exposición de las células aun choque eléctrico).

La microinyección: Es una técnica muy potente y eficaz, ya que 1 de cada 5 células consigue incorporar el DNA foráneo de forma permanente. El problema de esta técnica es que exclusivamente se puede inyectar una célula cada vez, y por tanto no es el más recomendable para una terapia médica debido a que es demasiado laboriosa como para obtener un número de células indicadas. Este método que se emplea en la introducción del DNA recombinante en las células embrionarias en el proceso de obtención de animales transgénicos.


La electroporación: Es una técnica que crea o que dota a la membrana de cierta permeabilidad al DNA durante unos pocos segundos debido a una descarga eléctrica. Si la célula o grupo de células sometidas, a dicho choque eléctrico están sumergidas en un medio rico en plásmidos, alguno de ellos puede penetrar en una célula. El problema que suscita este método es que los choques eléctricos no pueden producir los efectos deseados en algunas células y dañarlas o matarlas debido a esta causa.


La biobalística: Es una técnica basada en principios físicos que permite literalmente disparar genes a las plantas. Para ello, el ácido nucleico que codifica los genes de interés se deposita en minúsculas partículas de oro u tungsteno, las que posteriormente son impulsadas por una fuerte columna de un gas (generalmente helio), hasta impactar los tejidos blancos de la especie a transformar. De esta manera, al penetrar las micropartículas la célula blanco, estas alcanzan el núcleo y depositan el ADN que portan transformando la célula con un nuevo gen





9.2.2 QUÍMICOS

Método del fosfato cálcico: Esta basado en la obtención de un precipitado entre el cloruro de calcio y el DNA en una solución salina de fosfatos. En esta situación co-precipitan formando unos agregados que son endocitados/fagocitados por las células. Aparentemente el agregado con calcio protege al DNA de la degradación por las nucleasas celulares. El tamaño y la calidad del precipitado es crítico para el éxito del proceso, que se ve afectado por factores tales como pequeños cambios en el pH de la solución. 


Método del DEAE dextrano: Es la obtención de complejos entre la resina DEAE y el DNA. Los polímeros de DEAE dextrano o polybreno tienen una carga que les permite unirse a las muy negativamente cargadas moléculas de DNA. El DNA acomplejado se introduce en las células mediante choque osmótico mediante DMSO o glicerol. El uso de DEAE dextrano se limita a las transfecciones transientes. 


Método DNA desnudo: El DNA desnudo (técnica en fase altamente experiemtal) es incapaz de entrar en una célula y aún consiguiendo entrar en ellas es rápidamente degradado. La línea de investigación busca incorporar esas secuencias de DNA a un transportador, que le encierra y le lleva hasta la célula Diana en dónde a través de interacciones de membrana se asocia con ella para entregar el material al interior.


Método Péptidos fusiogénicos: Los  péptidos fusiogénicos surgen en una linea de trabajo que nos permita paliar aquellas características del DNA desnudo que nos impiden la entrada. Estos péptidos fusiogénicosa se utilizan para compactar DNA. y de este modo adoptan DNA con proteínas ricas en cargas +, del tipos Histonas. Esto supone una condensación considerable, (visible con MET) ya que el DNA aparece en la forma de partículas de 50-150 nanometros, pero sólo un cierto grado de condensación permite que 1 transportador incluya 1 molécula de DNA. Asimismo la reducción de tamaño del DNA hasta unos 20 nanometros facilitaría el paso a la célula y hasta el núcleo, incrementando su protección contra las nucleases citoplasmáticas. En el proceso de penetración celular, los transportadores sintéticos (si su carga neta es +) interactuan con Aminoazucares de la Membrana plasmáticacon (carga -) para producir la incorporación a la célula en forma de endosomas. Por tanto tenemos un problema más a superar.

Método  de Liposomas:  Los liposomas estan formados por DNA y lipidos no inmunogénicos cargados positivamente (lípidos cationicos). Inicialmente se empezó a trabajar con lípidos no inmunogénicosados, ya que la organización de los lípidos en bicapa podría facilitar el paso a través de la membrana citoplasmática. Aunque estos lípidos no englobaban mucho DNA.
A raiz de esto se crearon los liposomas que superan el problema de la compactación debido a que el DNA se contornea como consecuencia de las cargas positivas de lípidos.







TAREA: LAS BACTERIAS DE DIFERENTES ESPECIES PUEDEN COMPARTIR PLASMIDOS?? (TRANSFORMACIÓN) SI, NO Y POR QUE?? EJEMPLOS:



SI.... ¡¡POR QUE!!.....
Los plásmidos conjugativos forman parte del ADN bacteriano y los plásmidos sólo pueden existir y multiplicarse dentro de una célula. Estos plásmidos aprovechan la maquinaria celular y a continuación se trasladan a otra célula. De este modo la bacteria consigue propagarse. Determinaron el origen de varios plásmidos IncP-1 y su movilidad entre distintas especies de bacterias.  Los plásmidos IncP-1 son "vehículos" de enorme potencia para transportar genes de resistencia a antibióticos entre especies de bacterias. Por tanto no importa demasiado en qué entorno, parte del mundo o especie bacteriana surge la resistencia a antibióticos. Los genes de resistencia podrían desplazarse con facilidad de un entorno de desarrollo original a bacterias capaces de infectar a humanos mediante plásmidos IncP-1 u otros plásmidos con propiedades similares que ejercieran de "vehículos". Los plásmidos se replican y se transmiten independientemente del cromosoma bacteriano. La replicación y la transcripción de los plásmidos dependen de las proteínas de su hospedero.






CONCLUSIÓN:
Hemos concluido que en esta unidad establecimos todos los puntos indicados vistos por el profesor y analizados por nosotros el cual comprendimos como se lleva acabo la transferencia del material genetico asi como sus mecanismos de transferencia natural y artificial. 


BIBLIOGRAFIA:
  •     http://www.ugr.es/~eianez/Microbiologia/17transforma.htm
  •      http://www.revista.unam.mx/vol.7/num11/art89/nov_art89.pdf
  •      http://microral.wikispaces.com/3.+Gen%C3%A9tica+bacteriana.
  •  http://comunidadbiomedica.blogspot.mx/2011/05/bacterias-y-resistencia-antibioticos-la.html
  •      http://es.scribd.com/doc/75710578/Biologia-Taller